OVCAR-8人卵巢癌细胞代次低|培养基|送STR图谱

"OVCAR-8人卵巢癌细胞代次低|培养基|送STR图谱

传代比例：1:2-1:4(首次传代建议1:2)

生长特性：贴壁生长

细胞系的选择需要考虑到细胞系的功能特点、生长速率、铺板效率、生长条件和生长特征、克隆效率、培养方式等因素，如果您想高产量表达重组蛋白，您可以选择可以悬浮生长的快速生长细胞系。细胞培养的操作步骤主要包括传代、换液、冻存和复苏。这些步骤确保了细胞能够在实验室环境中长期存活并继续增殖。传代是将细胞从一个容器转移到另一个容器的过程，以扩大细胞数量；换液是为了清除代谢废物并补充新鲜培养基；冻存则是为了长期保存细胞，而复苏则是重新激活冷冻保存的细胞使其恢复正常生长。

换液周期：每周2-3次

Sarcoma OSteogenic-2 Cells;背景说明：该细胞是FoghJ和TrempeG分离和鉴定的众多人类肿瘤细胞系中的一种；该细胞来自一位１１岁的白人女性的骨肉瘤组织。患者经过放疗以及甲喋呤、阿霉素、长春新碱、环磷酰胺和aramycin-C等多种药物治疗。该细胞在免疫抑制小鼠中不致瘤，细胞表达表皮生长因子EGF受体、转化生长因子β（１型和２型）受体。;传代方法：１：２-１：４传代；每周１-２次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样；多角形;相关产品有：8305C_1细胞、MZ-CRC-1细胞、MC116细胞

HPAF2 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：EB-2细胞、NCI-H1373细胞、NCIH358细胞

LN229 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：４-１：６传代；每周换液２-３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：Hs 870.T细胞、H647ell细胞、Swiss3T3细胞

OVCAR-8人卵巢癌细胞代次低|培养基|送STR图谱

背景信息：详见相关文献介绍

┈订┈购(技术服务)┈热┈线：1┈3┈6┈4┈1┈9┈3┈0┈7┈9┈1【微信同号】┈Q┈Q：3┈1┈8┈0┈8┈0┈7┈3┈2┈4；

细胞培养应用于分子生物学、细胞生物学、遗传学、免疫学、肿瘤学及病毒学等领域，细胞培养是指将细胞从动物或植物体内取出，然后在适宜的人工环境中生长的过程。细胞可以在培养前直接从组织中取出并通过酶或机械方法进行解离，也可以来源于已建立的细胞系。传代培养是指当细胞生长至高密度时，将其分殖至新的培养瓶中，以维持其生长和增殖。贴壁细胞是指在培养基表面附着生长的细胞，悬浮细胞是指在培养基中悬浮生长的细胞，不依附于培养皿表面。半贴壁半悬浮细胞同时具备贴壁细胞和悬浮细胞的特点，通常在培养基中部分附着生长，部分悬浮于培养基上。

产品包装：复苏发货：T25培养瓶(一瓶)或冻存发货：1ml冻存管(两支)

来源说明：细胞主要来源ATCC、ECACC、DSMZ、RIKEN等细胞库

OVCAR-8人卵巢癌细胞代次低|培养基|送STR图谱

物种来源：人源、鼠源等其它物种来源

SKMES1 Cells;背景说明：源于一位６５岁患有肺鳞状细胞癌的白人男性，自转移性胸腔积液分离而来。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：MG63细胞、NU-GC-4细胞、SW-982细胞

SCC-25 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：１０传代，２-３天换液１次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：ZR75-1细胞、HUT 28细胞、RPMI #1846细胞

CNE1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：OE33细胞、KMS-11细胞、HEK-293细胞

Loucy Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：２-３天换液１次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞样　;相关产品有：Hep G2/C3A细胞、Mc Ardle 7777细胞、Hs294T细胞

┈订┈购(技术服务)┈热┈线：1┈3┈6┈4┈1┈9┈3┈0┈7┈9┈1【微信同号】┈Q┈Q：3┈1┈8┈0┈8┈0┈7┈3┈2┈4；

形态特性：上皮细胞样

细胞株(系)的使用，为医学研究和测试工作带来了大的方便。但细胞的传代是有限制的，长期连续传代的细胞，不仅消耗大量的人力和物力，而且细胞的生长与形态等会有一定退变或转化，因而细胞失去原有的遗传性，有时还会由于细胞污染而造成传代中断，种子丢失。因此，在实际工作中常需冻存一定数量的细胞，以备替换使用。细胞冷冻与复苏是细胞培养 室的常规工作和通用技术。目前，细胞冻存Zui常用的技术是冷冻保存法，主要采用加适量保护剂的缓慢冷冻法冻存细胞。细胞在不加任何保护剂的情况下直接冷冻，细胞内外的水分会很快形成冰晶，从而引起一系列不良反应。如细胞脱水使局部电解质浓度增GAO，pH值改变，部分蛋白质由于上述原因而变性，引起细胞内部空间结构紊乱，溶酶体膜由此遭到损伤而释放出溶酶体酶，使细胞内结构成分造成破坏，线粒体肿胀，功能丢失，并造成能量代谢障碍。胞膜上的类脂蛋白复合体也易破坏引起细胞膜通透性的改变，使细胞内容物丢失。如果细胞内冰晶形成较多，随冷冻温度的降低，冰晶体积膨胀造成细胞核DNA空间构型发生不可逆的损伤，而致细胞死亡。因此，细胞冷冻技术的关键是尽可能地减少细胞内水分，减少细胞内冰晶的形成。采用甘油或二甲基亚砜作保护剂，这两种物质分子量小，溶解度大，易穿透细胞，可以使冰点下降，提GAO细胞膜对水的通透性，且对细胞无明显毒性。慢速冷冻方法又可使细胞内的水分渗出细胞外，减少胞内形成冰结晶的机会，从而减少冰晶对细胞的损伤。

NCI-H1048 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：８传代；;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：TE 85.T细胞、CMT 167细胞、RAG细胞

MFE-296 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：PIG1细胞、H-747细胞、A375mel细胞

TYK-nu Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SEG-1细胞、Mv 1 Lu (NBL-7)细胞、HTSMC细胞

C-643 Cells;背景说明：甲状腺未分化癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：AD293细胞、RA.1细胞、Granta519细胞

HuTu 80 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２—１：５传代，每周换液２-３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：BT483细胞、MPC-83细胞、Nakata-1细胞

I90 Cells;背景说明：W.W. Nichols及其同事从一位１６周女婴的肺中取材，建立了人二倍体成纤维细胞株IMR-９０。分裂潜能，病毒感受性和其它性质都得到了充分研究，因而这株细胞可以作为WI-３８或其它标准人肺细胞株的替代株。有报道称这株细胞在表现出衰老前可倍增５８次。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长　;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MES 13细胞、SW1463细胞、INS-1细胞

NCI-ADR-RES Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Wayne State University-Head and Neck 13细胞、RPMI1846细胞、WEHI164细胞

FOX-NY Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：A-875细胞、C8161细胞、MLO-Y4细胞

Panc 08.13 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：AZ 521细胞、HKF细胞、HSAS1细胞

HuH 6 Cells;背景说明：肝癌。据说产球蛋白和甲胎蛋白。;传代方法：消化３-５分钟。１：２。６-７天长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：UACC812细胞、OE19细胞、NCI-SNU-601细胞

PLA 802 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MCF-7ADR细胞、Fukuoka University-Malignant mixed Mullerian Tumor-1细胞、MGH-UI细胞

SUDHL2 Cells;背景说明：弥漫性大细胞淋巴瘤；胸腔积液转移；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：L-M (TK-)细胞、SV-HUC细胞、NCTC929细胞

SK-UT-1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：４-１：１２传代，２天换液１次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：TE-14细胞、3-LL细胞、HPAEpiC细胞

MGH-U3 (RN) Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：P3X63Ag8细胞、MCF-10 Attached细胞、BV-173细胞

HOP-92 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：L-WRN细胞、SCC25细胞、LA-N-6细胞

DoTc2 4510 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２—１：３传代，每周换液２—３次;生长特性：贴壁生长　;形态特性：上皮样;相关产品有：COLO201细胞、SACC-83细胞、T-47-D细胞

GTL16 Cells;背景说明：胃癌；肝转移；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NCI-H1184细胞、H-1341细胞、MBVP细胞

50B11 clone D4W Cells(提供STR鉴定图谱)

Abcam K-562 DGKA KO Cells(提供STR鉴定图谱)

ANE58 Cells(提供STR鉴定图谱)

BayGenomics ES cell line RRK340 Cells(提供STR鉴定图谱)

BayGenomics ES cell line XM110 Cells(提供STR鉴定图谱)

Calu-1 W5S2 Cells(提供STR鉴定图谱)

DA00617 Cells(提供STR鉴定图谱)

DA05953 Cells(提供STR鉴定图谱)

GM00337 Cells(提供STR鉴定图谱)

MILE SVEN 1 Cells;背景说明：MS１是１９９４年建株的胰岛内皮细胞株。原代培养的胰岛内皮细胞用抗G４１８的温度敏感型SV４０大T抗原(tsA-５８-３)转染。抗性克隆用克隆环分离，并筛选吸收dil-Ac-LDL的。这株细胞保留了内皮细胞的许多特性，如吸收乙酰化LDL和表达八因子相关抗原及BEGF受体。;传代方法：消化３-５分钟。１：２。３天内可长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：AN3 CA细胞、Ha Fe细胞、GM04154细胞

OVCAR-8人卵巢癌细胞代次低|培养基|送STR图谱

RGM1 Cells;背景说明：胃黏膜；上皮细胞；自发永生；Wistar;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：C1R细胞、HT-29细胞、SKMel-28细胞

293 EBNA Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：４-１：１０传代；每周２次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：Calu 3细胞、SUM159细胞、B 95-8细胞

NRK49F Cells;背景说明：肾；成纤维细胞；自发永生;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SN4741细胞、GM04678细胞、3T3-L1 ad细胞

H1341 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：３-４天换液１次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：圆形细胞;相关产品有：T47D:A细胞、TE354.T细胞、H-1666细胞

H19-7 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：GM07404细胞、OCI AML2细胞、SCL-II细胞

294.35.2.6.3 Cells(提供STR鉴定图谱)

SK-BR-3 Cells;背景说明：这株细胞源自胸水。没有病毒颗粒。亚显微结构特征包括微丝和桥粒，肝糖原颗粒，大溶酶体，成束的细胞质纤丝。SK-BR-３细胞株过表达HER２/c-erb-２基因产物。;传代方法：消化３-５分钟，１：２,３天内可长满;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：KMS11细胞、CAMA-1细胞、OVCAR 432细胞

H-526 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：每周换液２-３次。;生长特性：悬浮生长 ;形态特性：上皮细胞;相关产品有：HMEC-1细胞、GM05384细胞、Mono-Mac-1细胞

SKMEL28 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：８传代，２-３天换液１次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：星形的;相关产品有：Panc 05.04细胞、Pt K1细胞、PC3M-1E8细胞

BNL 1ME A.7R.1 Cells;背景说明：肝；上皮细胞；BALB/c;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HCC2218细胞、SW 1573细胞、COLO 684细胞

ME1 Cells;背景说明：急性髓系白血病；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：TE9细胞、Tb 1 Lu (NBL-12)细胞、NCI-H2228细胞

Hs-343-T Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２—１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞;相关产品有：FL83B细胞、RCK-8细胞、HCT FET细胞

OV1-P Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H740细胞、SK-ChA-1细胞、UPCI:SCC154细胞

H-2141 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：３-４天换液１次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：聚团悬浮;相关产品有：67NR细胞、TK10细胞、bEND.3细胞

GM28879 Cells(提供STR鉴定图谱)

HAP1 PEX3 (-) 2 Cells(提供STR鉴定图谱)

MSTO-211 Cells;背景说明：MSTO-２１１H细胞株是１９８５年从一位肺二相间皮瘤患者的胸水中建株的。这个病人接受过多种药物联合前期化疗。MSTO-２１１H细胞具有高亲和力的EGF结合位点，并表达神经元特异性烯醇酶(NSE)及人绒毛膜促性腺激素(HCG)的α与β亚基。未检测到左旋多巴胺脱羧酶(DDC)，邦巴辛与神经tensin。细胞过表达c-myc原癌基因，并没有观察到基因重排或扩增。V-src,v-abl,v-erbB,c-raf１,Ha-ras,Ki-ras,和N-ras的表达呈阳性。未检测到N-m;传代方法：消化３-５分钟。１：２。３天内可长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞样;相关产品有：HSC2细胞、TFK1细胞、SK.MEL.2细胞

TE-12 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SKNBE细胞、U2-OS细胞、SuDHL 1细胞

FCCH1024 Cells;背景说明：该细胞源自一位１４岁患有T淋巴细胞白血病男性的外周血;传代方法：保持细胞密度在３—９×１０５cells/ml之间，１：５—１：１０传代，每周换液２—３次;生长特性：悬浮生长;形态特性：圆形，单个或呈片;相关产品有：751-NA细胞、KBM-7细胞、Emory University-3细胞

DHL6 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３—１：６传代，３—４天换液１次;生长特性：悬浮生长 ;形态特性：淋巴母细胞样;相关产品有：KASUMI6细胞、C22细胞、LM(TK-)细胞

A-20 Cells;背景说明：淋巴瘤；BALB/cAnN;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：EFM192A细胞、NPA 87细胞、SN4741细胞

JVM3 Cells;背景说明：慢性髓白血病；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NCI-SNU-761细胞、MDA-MB-231细胞、SH-SY5Y细胞

SW 1271 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：J774 A1细胞、T-T细胞、COLO-699细胞

Asian Medical Center-Head and Neck cancer-8 Cells;背景说明：喉癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：L 540细胞、RMC细胞、P3-X63-Ag8-653细胞

hsAQC2 Cells(提供STR鉴定图谱)

KOLF2.1J SEZ6L2 28.6KBDEL DEL/DEL Cells(提供STR鉴定图谱)

MOLP-3 Cells(提供STR鉴定图谱)

NYSCF-050956-01-MR Cells(提供STR鉴定图谱)

RG-328 Cells(提供STR鉴定图谱)

Ubigene HCT 116 DUSP10 KO Cells(提供STR鉴定图谱)

VUi015-A Cells(提供STR鉴定图谱)

HAP1 USP16 (-) 5 Cells(提供STR鉴定图谱)

B-3 Cells;背景说明：晶状体；Ad１２-SV４０转化；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：COLO-738细胞、Hs578Bst细胞、H-2452细胞

ASH-3 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H-1703细胞、SW756细胞、NCI-H2342细胞

SV-HUC-1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长　;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Neuro 2a细胞、NCI-UMC-11细胞、NCI-SNU-475细胞

H-2196 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：６传代；每周换液２次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HTori 3细胞、PANC3.27细胞、C1R细胞

C-4I Cells;背景说明：宫颈鳞癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：BMF细胞、YH-13细胞、Pa18C细胞

C-4I Cells;背景说明：宫颈鳞癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：BMF细胞、YH-13细胞、Pa18C细胞

EFM-192A Cells;背景说明：乳腺癌；胸腔积液转移；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H524细胞、Anip 973细胞、Mv1Lu细胞

HS852.T Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：HEL-299细胞、NCIH1915细胞、Fetal Rhesus Kidney-4细胞

NCIH1573 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代，每周２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：CT26细胞、KYSE50细胞、MOVAS细胞

U-266 AR1 Cells;背景说明：骨髓瘤；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：DI TNC1细胞、SU86.86细胞、H1819细胞

C42 Cells;背景说明：前列腺癌；左锁骨上淋巴结转移；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：LUDLU-1细胞、1E8-H细胞、PLA 802细胞

C57/B6-L Cells;背景说明：肺；成纤维细胞；C５７;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Hs611T细胞、CCD-112CoN细胞、P3 88 D1细胞

SCC154 Cells;背景说明：舌鳞癌；男性；HPV６转化;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Plaepi 34细胞、VM-CUB1细胞、BHT101细胞

PANC0327 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：3T3 L1细胞、EU-2细胞、Granta-519细胞

C3H10T1/2 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NCIH1573细胞、PCI-04B细胞、HCEpiC细胞

STSAR-104 Cells(提供STR鉴定图谱)

H1299 Cells;背景说明：这株细胞来源于一个淋巴结转移。患者接受了初期放疗。细胞均一性的部分缺失p５３蛋白，并缺少p５３蛋白表达。细胞可以合成０.１pmol/毫克蛋白的NMB蛋白，而不合成促胃液释放肽(GRP)。;传代方法：１：２传代；３天传代一次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样；多角形;相关产品有：C-4-I细胞、Jurkat细胞、T8细胞

NCI-H157 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长　;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Tu 212细胞、SUD4细胞、CAL 12T细胞

SK-ChA-1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：CHL细胞、PC-3细胞、TOV-112D细胞

EFM-192C Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：C-33A细胞、MDAPC2B细胞、293-H细胞

COS7 Cells;背景说明：此细胞株源自CV-１细胞株，经转染起始点缺失的SV４０病毒突变体得到；编码表达野生型T抗原，所以该细胞适合作为需要SV４０T抗原表达的载体的转染宿主。该细胞表达T抗原，允许SV４０病毒的溶解性生长，支持４０℃时温度敏感性A２０９病毒的复制，支持起始区域缺陷的SV４０突变体的复制。因含有SV４０病毒的DNA序列，该细胞需要在２级生物安全柜中操作。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞样;相关产品有：BALB/3T3 cl. A31细胞、HR1K细胞、Vx2细胞

NCTC-3960 Cells;背景说明：黑色素瘤；雄性；DBA;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：JVM-2细胞、HuT102细胞、TPC-1细胞

OVCAR-8人卵巢癌细胞代次低|培养基|送STR图谱

OCI-Ly7 Cells;背景说明：弥漫大B淋巴瘤；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NRK 49F细胞、HFT 8810细胞、PC-2 [Human pancreatic carcinoma]细胞

SKNBE Cells;背景说明：１９７２年１１月从一们多次化疗及放疗的扩散性神经母细胞瘤患儿骨髓穿刺物中建立了SK-N-BE(２)神经母细胞瘤细胞株。 该细胞显示中等水平的多巴胺-β-羟基酶活性。 有报道称SK-N-BE(２)细胞的饱和浓度超过１x１０６细胞/平方厘米。细胞形态多样，有的有长突触，有的呈上皮细胞样。 细胞会聚集，形成团块并浮起;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：PZ-HPV-7细胞、L-132细胞、H-446细胞

K299 Cells;背景说明：间变性大细胞淋巴瘤；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：CL34细胞、H-2347细胞、NK-92细胞

Highly Aggressively Proliferating Immortalized Cells;背景说明：小胶质细胞；自发永生；Wistar;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：半贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：THP 1细胞、Anip[973]细胞、H2110细胞

P3-X63-Ag8.653 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：IMR 32细胞、MEG01细胞、C38细胞

EFM192 Cells;背景说明：乳腺癌；胸腔积液转移；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SUDHL8细胞、HME-1细胞、SCL-I细胞

H-2122 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：４传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：B16-F1细胞、ACHN细胞、293FT细胞

H2227 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：４传代；每周换液２次。;生长特性：该细胞既有悬浮生长，又有贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：Hs 281.T细胞、ATN1细胞、2T细胞

BayGenomics ES cell line HMA249 Cells(提供STR鉴定图谱)

BayGenomics ES cell line XB470 Cells(提供STR鉴定图谱)

CJ.F4 Cells(提供STR鉴定图谱)

MANDYS13-6G1 Cells(提供STR鉴定图谱)

rSN-21-2 Cells(提供STR鉴定图谱)

UMR-105 Cells(提供STR鉴定图谱)

" "PubMed=1348364; DOI=10.1073/pnas.89.7.3070; PMCID=PMC48805

Godwin A.K., Meister A., O'Dwyer P.J., Huang C.-S., Hamilton T.C., Anderson M.E.

High resistance to cisplatin in human ovarian cancer cell lines is associated with marked increase of glutathione synthesis.

Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 89:3070-3074(1992)

PubMed=7718330; DOI=10.1016/0959-8049(94)00472-H

Baguley B.C., Marshall E.S., Whittaker J.R., Dotchin M.C., Nixon J., McCrystal M.R., Finlay G.J., Matthews J.H.L., Holdaway K.M., van Zijl P.L.

Resistance mechanisms determining the in vitro sensitivity to paclitaxel of tumour cells cultured from patients with ovarian cancer.

Eur. J. Cancer 31A:230-237(1995)

PubMed=9041185

Johnson S.W., Laub P.B., Beesley J.S., Ozols R.F., Hamilton T.C.

Increased platinum-DNA damage tolerance is associated with cisplatin resistance and cross-resistance to various chemotherapeutic agents in unrelated human ovarian cancer cell lines.

Cancer Res. 57:850-856(1997)

PubMed=10700174; DOI=10.1038/73432

Ross D.T., Scherf U., Eisen M.B., Perou C.M., Rees C., Spellman P.T., Iyer V.R., Jeffrey S.S., van de Rijn M., Waltham M.C., Pergamenschikov A., Lee J.C.F., Lashkari D., Shalon D., Myers T.G., Weinstein J.N., Botstein D., Brown P.O.

Systematic variation in gene expression patterns in human cancer cell lines.

Nat. Genet. 24:227-235(2000)

PubMed=12417041; DOI=10.1111/j.1349-7006.2002.tb01213.x; PMCID=PMC5926887

Watanabe T., Imoto I., Katahira T., Hirasawa A., Ishiwata I., Emi M., Takayama M., Sato A., Inazawa J.

Differentially regulated genes as putative targets of amplifications at 20q in ovarian cancers.

Jpn. J. Cancer Res. 93:1114-1122(2002)

PubMed=12960427; DOI=10.1091/mbc.E03-05-0279; PMCID=PMC266758

Schaner M.E., Ross D.T., Ciaravino G., Sorlie T., Troyanskaya O.G., Diehn M., Wang Y.C., Duran G.E., Sikic T.L., Caldeira S., Skomedal H., Tu I.-P., Hernandez-Boussard T., Johnson S.W., O'Dwyer P.J., Fero M.J., Kristensen G.B., Borresen-Dale A.-L., Hastie T.J., Tibshirani R., van de Rijn M., Teng N.N.H., Longacre T.A., Botstein D., Brown P.O., Sikic B.I.

Gene expression patterns in ovarian carcinomas.

Mol. Biol. Cell 14:4376-4386(2003)

PubMed=15748285; DOI=10.1186/1479-5876-3-11; PMCID=PMC555742

Adams S., Robbins F.-M., Chen D., Wagage D., Holbeck S.L., Morse H.C. 3rd, Stroncek D., Marincola F.M.

HLA class I and II genotype of the NCI-60 cell lines.

J. Transl. Med. 3:11.1-11.8(2005)

PubMed=17088437; DOI=10.1158/1535-7163.MCT-06-0433; PMCID=PMC2705832

Ikediobi O.N., Davies H.R., Bignell G.R., Edkins S., Stevens C., O'Meara S., Santarius T., Avis T., Barthorpe S., Brackenbury L., Buck G., Butler A.P., Clements J., Cole J., Dicks E., Forbes S., Gray K., Halliday K., Harrison R., Hills K., Hinton J., Hunter C., Jenkinson A., Jones D., Kosmidou V., Lugg R., Menzies A., Miroo T., Parker A., Perry J., Raine K.M., Richardson D., Shepherd R., Small A., Smith R., Solomon H., Stephens P.J., Teague J.W., Tofts C., Varian J., Webb T., West S., Widaa S., Yates A., Reinhold W.C., Weinstein J.N., Stratton M.R., Futreal P.A., Wooster R.

Mutation analysis of 24 known cancer genes in the NCI-60 cell line set.

Mol. Cancer Ther. 5:2606-2612(2006)

PubMed=19372543; DOI=10.1158/1535-7163.MCT-08-0921; PMCID=PMC4020356

Lorenzi P.L., Reinhold W.C., Varma S., Hutchinson A.A., Pommier Y., Chanock S.J., Weinstein J.N.

DNA fingerprinting of the NCI-60 cell line panel.

Mol. Cancer Ther. 8:713-724(2009)

PubMed=20164919; DOI=10.1038/nature08768; PMCID=PMC3145113

Bignell G.R., Greenman C.D., Davies H.R., Butler A.P., Edkins S., Andrews J.M., Buck G., Chen L., Beare D., Latimer C., Widaa S., Hinton J., Fahey C., Fu B.-Y., Swamy S., Dalgliesh G.L., Teh B.T., Deloukas P., Yang F.-T., Campbell P.J., Futreal P.A., Stratton M.R.

Signatures of mutation and selection in the cancer genome.

Nature 463:893-898(2010)

PubMed=20204287; DOI=10.3892/or_00000728; PMCID=PMC2909445

Langland G.T., Yannone S.M., Langland R.A., Nakao A., Guan Y.-H., Long S.B.T., Vonguyen L., Chen D.J., Gray J.W., Chen F.-Q.

Radiosensitivity profiles from a panel of ovarian cancer cell lines exhibiting genetic alterations in p53 and disparate DNA-dependent protein kinase activities.

Oncol. Rep. 23:1021-1026(2010)

DOI=10.4172/2157-7145.S2-005

Fang R.-X., Shewale J.G., Nguyen V.T., Cardoso H., Swerdel M.R., Hart R.P., Furtado M.R.

STR profiling of human cell lines: challenges and possible solutions to the growing problem.

J. Forensic Res. 2 Suppl. 2:5-5(2011)

PubMed=22068913; DOI=10.1073/pnas.1111840108; PMCID=PMC3219108

Gillet J.-P., Calcagno A.M., Varma S., Marino M., Green L.J., Vora M.I., Patel C., Orina J.N., Eliseeva T.A., Singal V., Padmanabhan R., Davidson B., Ganapathi R., Sood A.K., Rueda B.R., Ambudkar S.V., Gottesman M.M.

Redefining the relevance of established cancer cell lines to the study of mechanisms of clinical anti-cancer drug resistance.

Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108:18708-18713(2011)

PubMed=21912889; DOI=10.1007/s10637-011-9744-z

Sutherland H.S., Hwang I.Y., Marshall E.S., Lindsay B.S., Denny W.A., Gilchrist C., Joseph W.R., Greenhalgh D., Richardson E., Kestell P., Ding A., Baguley B.C.

Therapeutic reactivation of mutant p53 protein by quinazoline derivatives.

Invest. New Drugs 30:2035-2045(2012)

PubMed=22336246; DOI=10.1016/j.bmc.2012.01.017

Kong D.-X., Yamori T.

JFCR39, a panel of 39 human cancer cell lines, and its application in the discovery and development of anticancer drugs.

Bioorg. Med. Chem. 20:1947-1951(2012)

PubMed=22347499; DOI=10.1371/journal.pone.0031628; PMCID=PMC3276511

Ruan X.-Y., Kocher J.-P.A., Pommier Y., Liu H.-F., Reinhold W.C.

Mass homozygotes accumulation in the NCI-60 cancer cell lines as compared to HapMap trios, and relation to fragile site location.

PLoS ONE 7:E31628-E31628(2012)

PubMed=22384151; DOI=10.1371/journal.pone.0032096; PMCID=PMC3285665

Lee J.-S., Kim Y.K., Kim H.J., Hajar S., Tan Y.L., Kang N.-Y., Ng S.H., Yoon C.N., Chang Y.-T.

Identification of cancer cell-line origins using fluorescence image-based phenomic screening.

PLoS ONE 7:E32096-E32096(2012)

PubMed=22460905; DOI=10.1038/nature11003; PMCID=PMC3320027

Barretina J.G., Caponigro G., Stransky N., Venkatesan K., Margolin A.A., Kim S., Wilson C.J., Lehar J., Kryukov G.V., Sonkin D., Reddy A., Liu M., Murray L., Berger M.F., Monahan J.E., Morais P., Meltzer J., Korejwa A., Jane-Valbuena J., Mapa F.A., Thibault J., Bric-Furlong E., Raman P., Shipway A., Engels I.H., Cheng J., Yu G.-Y.K., Yu J.-J., Aspesi P. Jr., de Silva M., Jagtap K., Jones M.D., Wang L., Hatton C., Palescandolo E., Gupta S., Mahan S., Sougnez C., Onofrio R.C., Liefeld T., MacConaill L.E., Winckler W., Reich M., Li N.-X., Mesirov J.P., Gabriel S.B., Getz G., Ardlie K., Chan V., Myer V.E., Weber B.L., Porter J., Warmuth M., Finan P., Harris J.L., Meyerson M.L., Golub T.R., Morrissey M.P., Sellers W.R., Schlegel R., Garraway L.A.

The Cancer Cell Line Encyclopedia enables predictive modelling of anticancer drug sensitivity.

Nature 483:603-607(2012)

PubMed=22585861; DOI=10.1158/2159-8290.CD-11-0224; PMCID=PMC5057396

Marcotte R., Brown K.R., Suarez Saiz F.J., Sayad A., Karamboulas K., Krzyzanowski P.M., Sircoulomb F., Medrano M., Fedyshyn Y., Koh J.L.-Y., van Dyk D., Fedyshyn B., Luhova M., Brito G.C., Vizeacoumar F.J., Vizeacoumar F.S., Datti A., Kasimer D., Buzina A., Mero P., Misquitta C., Normand J., Haider M., Ketela T., Wrana J.L., Rottapel R., Neel B.G., Moffat J.

Essential gene profiles in breast, pancreatic, and ovarian cancer cells.

Cancer Discov. 2:172-189(2012)

PubMed=22628656; DOI=10.1126/science.1218595; PMCID=PMC3526189

Jain M., Nilsson R., Sharma S., Madhusudhan N., Kitami T., Souza A.L., Kafri R., Kirschner M.W., Clish C.B., Mootha V.K.

Metabolite profiling identifies a key role for glycine in rapid cancer cell proliferation.

Science 336:1040-1044(2012)

PubMed=22710073; DOI=10.1016/j.ygyno.2012.06.017; PMCID=PMC3432677

Korch C.T., Spillman M.A., Jackson T.A., Jacobsen B.M., Murphy S.K., Lessey B.A., Jordan V.C., Bradford A.P.

DNA profiling analysis of endometrial and ovarian cell lines reveals misidentification, redundancy and contamination.

Gynecol. Oncol. 127:241-248(2012)

PubMed=23415752; DOI=10.1016/j.molonc.2012.12.007; PMCID=PMC4106023

Stordal B., Timms K., Farrelly A., Gallagher D., Busschots S., Renaud M., Thery J., Williams D., Potter J., Tran T., Korpanty G., Cremona M., Carey M.S., Li J., Li Y., Aslan O., O'Leary J.J., Mills G.B., Hennessy B.T.

BRCA1/2 mutation analysis in 41 ovarian cell lines reveals only one functionally deleterious BRCA1 mutation.

Mol. Oncol. 7:567-579(2013)

PubMed=23839242; DOI=10.1038/ncomms3126; PMCID=PMC3715866

Domcke S., Sinha R., Levine D.A., Sander C., Schultz N.

Evaluating cell lines as tumour models by comparison of genomic profiles.

Nat. Commun. 4:2126.1-2126.10(2013)

PubMed=23856246; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-12-3342; PMCID=PMC4893961

Abaan O.D., Polley E.C., Davis S.R., Zhu Y.-L.J., Bilke S., Walker R.L., Pineda M.A., Gindin Y., Jiang Y., Reinhold W.C., Holbeck S.L., Simon R.M., Doroshow J.H., Pommier Y., Meltzer P.S.

The exomes of the NCI-60 panel: a genomic resource for cancer biology and systems pharmacology.

Cancer Res. 73:4372-4382(2013)

PubMed=23933261; DOI=10.1016/j.celrep.2013.07.018

Moghaddas Gholami A., Hahne H., Wu Z.-X., Auer F.J., Meng C., Wilhelm M., Kuster B.

Global proteome analysis of the NCI-60 cell line panel.

Cell Rep. 4:609-620(2013)

PubMed=24023729; DOI=10.1371/journal.pone.0072162; PMCID=PMC3762837

Anglesio M.S., Wiegand K.C., Melnyk N., Chow C., Salamanca C.M., Prentice L.M., Senz J., Yang W., Spillman M.A., Cochrane D.R., Shumansky K., Shah S.P., Kalloger S.E., Huntsman D.G.

Type-specific cell line models for type-specific ovarian cancer research.

PLoS ONE 8:E72162-E72162(2013)

PubMed=24279929; DOI=10.1186/2049-3002-1-20; PMCID=PMC4178206

Dolfi S.C., Chan L.L.-Y., Qiu J., Tedeschi P.M., Bertino J.R., Hirshfield K.M., Oltvai Z.N., Vazquez A.

The metabolic demands of cancer cells are coupled to their size and protein synthesis rates.

Cancer Metab. 1:20.1-20.13(2013)

PubMed=24670534; DOI=10.1371/journal.pone.0092047; PMCID=PMC3966786

Varma S., Pommier Y., Sunshine M., Weinstein J.N., Reinhold W.C.

High resolution copy number variation data in the NCI-60 cancer cell lines from whole genome microarrays accessible through CellMiner.

PLoS ONE 9:E92047-E92047(2014)

PubMed=25984343; DOI=10.1038/sdata.2014.35; PMCID=PMC4432652

Cowley G.S., Weir B.A., Vazquez F., Tamayo P., Scott J.A., Rusin S., East-Seletsky A., Ali L.D., Gerath W.F.J., Pantel S.E., Lizotte P.H., Jiang G.-Z., Hsiao J., Tsherniak A., Dwinell E., Aoyama S., Okamoto M., Harrington W., Gelfand E.T., Green T.M., Tomko M.J., Gopal S., Wong T.C., Li H.-B., Howell S., Stransky N., Liefeld T., Jang D., Bistline J., Meyers B.H., Armstrong S.A., Anderson K.C., Stegmaier K., Reich M., Pellman D., Boehm J.S., Mesirov J.P., Golub T.R., Root D.E., Hahn W.C.

Parallel genome-scale loss of function screens in 216 cancer cell lines for the identification of context-specific genetic dependencies.

Sci. Data 1:140035-140035(2014)

PubMed=25485619; DOI=10.1038/nbt.3080

Klijn C., Durinck S., Stawiski E.W., Haverty P.M., Jiang Z.-S., Liu H.-B., Degenhardt J., Mayba O., Gnad F., Liu J.-F., Pau G., Reeder J., Cao Y., Mukhyala K., Selvaraj S.K., Yu M.-M., Zynda G.J., Brauer M.J., Wu T.D., Gentleman R.C., Manning G., Yauch R.L., Bourgon R., Stokoe D., Modrusan Z., Neve R.M., de Sauvage F.J., Settleman J., Seshagiri S., Zhang Z.-M.

A comprehensive transcriptional portrait of human cancer cell lines.

Nat. Biotechnol. 33:306-312(2015)

PubMed=25877200; DOI=10.1038/nature14397

Yu M., Selvaraj S.K., Liang-Chu M.M.Y., Aghajani S., Busse M., Yuan J., Lee G., Peale F.V., Klijn C., Bourgon R., Kaminker J.S., Neve R.M.

A resource for cell line authentication, annotation and quality control.

Nature 520:307-311(2015)

PubMed=26589293; DOI=10.1186/s13073-015-0240-5; PMCID=PMC4653878

Scholtalbers J., Boegel S., Bukur T., Byl M., Goerges S., Sorn P., Loewer M., Sahin U., Castle J.C.

TCLP: an online cancer cell line catalogue integrating HLA type, predicted neo-epitopes, virus and gene expression.

Genome Med. 7:118.1-118.7(2015)

PubMed=27235858; DOI=10.1016/j.ygyno.2016.05.028; PMCID=PMC4961516

Hernandez L., Kim M.K., Lyle L.T., Bunch K.P., House C.D., Ning F., Noonan A.M., Annunziata C.M.

Characterization of ovarian cancer cell lines as in vivo models for preclinical studies.

Gynecol. Oncol. 142:332-340(2016)

PubMed=27377824; DOI=10.1038/sdata.2016.52; PMCID=PMC4932877

Mestdagh P., Lefever S., Volders P.-J., Derveaux S., Hellemans J., Vandesompele J.

Long non-coding RNA expression profiling in the NCI60 cancer cell line panel using high-throughput RT-qPCR.

Sci. Data 3:160052-160052(2016)

PubMed=27397505; DOI=10.1016/j.cell.2016.06.017; PMCID=PMC4967469

Iorio F., Knijnenburg T.A., Vis D.J., Bignell G.R., Menden M.P., Schubert M., Aben N., Goncalves E., Barthorpe S., Lightfoot H., Cokelaer T., Greninger P., van Dyk E., Chang H., de Silva H., Heyn H., Deng X.-M., Egan R.K., Liu Q.-S., Miroo T., Mitropoulos X., Richardson L., Wang J.-H., Zhang T.-H., Moran S., Sayols S., Soleimani M., Tamborero D., Lopez-Bigas N., Ross-Macdonald P., Esteller M., Gray N.S., Haber D.A., Stratton M.R., Benes C.H., Wessels L.F.A., Saez-Rodriguez J., McDermott U., Garnett M.J.

A landscape of pharmacogenomic interactions in cancer.

Cell 166:740-754(2016)

PubMed=27807467; DOI=10.1186/s13100-016-0078-4; PMCID=PMC5087121

Zampella J.G., Rodic N., Yang W.R., Huang C.R.L., Welch J., Gnanakkan V.P., Cornish T.C., Boeke J.D., Burns K.H.

A map of mobile DNA insertions in the NCI-60 human cancer cell panel.

Mob. DNA 7:20.1-20.11(2016)

PubMed=28196595; DOI=10.1016/j.ccell.2017.01.005; PMCID=PMC5501076

Li J., Zhao W., Akbani R., Liu W.-B., Ju Z.-L., Ling S.-Y., Vellano C.P., Roebuck P., Yu Q.-H., Eterovic A.K., Byers L.A., Davies M.A., Deng W.-L., Gopal Y.N.V., Chen G., von Euw E.M., Slamon D.J., Conklin D., Heymach J.V., Gazdar A.F., Minna J.D., Myers J.N., Lu Y.-L., Mills G.B., Liang H.

Characterization of human cancer cell lines by reverse-phase protein arrays.

Cancer Cell 31:225-239(2017)

PubMed=28273451; DOI=10.1016/j.celrep.2017.02.028

Medrano M., Communal L., Brown K.R., Iwanicki M., Normand J., Paterson J., Sircoulomb F., Krzyzanowski P.M., Novak M., Doodnauth S.A., Suarez Saiz F.J., Cullis J., Al-awar R., Neel B.G., McPherson J., Drapkin R.I., Ailles L., Mes-Masson A.-M., Rottapel R.

Interrogation of functional cell-surface markers identifies CD151 dependency in high-grade serous ovarian cancer.

Cell Rep. 18:2343-2358(2017)

PubMed=30485824; DOI=10.1016/j.celrep.2018.10.096; PMCID=PMC6481945

Papp E., Hallberg D., Konecny G.E., Bruhm D.C., Adleff V., Noe M., Kagiampakis I., Palsgrove D., Conklin D., Kinose Y., White J.R., Press M.F., Drapkin R.I., Easwaran H., Baylin S.B., Slamon D.J., Velculescu V.E., Scharpf R.B.

Integrated genomic, epigenomic, and expression analyses of ovarian cancer cell lines.

Cell Rep. 25:2617-2633(2018)

PubMed=30894373; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-18-2747; PMCID=PMC6445675

Dutil J., Chen Z.-H., Monteiro A.N.A., Teer J.K., Eschrich S.A.

An interactive resource to probe genetic diversity and estimated ancestry in cancer cell lines.

Cancer Res. 79:1263-1273(2019)

PubMed=30971826; DOI=10.1038/s41586-019-1103-9

Behan F.M., Iorio F., Picco G., Goncalves E., Beaver C.M., Migliardi G., Santos R., Rao Y., Sassi F., Pinnelli M., Ansari R., Harper S., Jackson D.A., McRae R., Pooley R., Wilkinson P., van der Meer D.J., Dow D., Buser-Doepner C.A., Bertotti A., Trusolino L., Stronach E.A., Saez-Rodriguez J., Yusa K., Garnett M.J.

Prioritization of cancer therapeutic targets using CRISPR-Cas9 screens.

Nature 568:511-516(2019)"