总抗氧化能力(DPPH法)试剂盒说明书
微量法100T/96S
注意:正式测定之前选择 2-3 个预期差异大的样本做预测定。
测定意义:
测定对象中各种抗氧化物质和抗氧化酶等构成总抗氧化水平。在生物学、医学和药学研究中
常常检测血浆、血清、唾液、尿液等各种体液,细胞或组织等裂解液、植物或中草药抽提液及各种抗氧化物(antioxidant)溶液的总抗氧化能力。
测定原理:
DPPH·为稳定的自由基 ,溶于甲醇,乙醇等极性溶剂中,在 515nm 处有最大吸收。向DPPH·溶液中加入抗氧化剂时,会发生脱色反应,因此可用吸光度的变化并以 Trolox 作为对照体系量化抗氧化物质的抗氧化能力。
组成:
产品名称 | AO038-100T/96S | Storage |
提取液:液体 | 120ml | 4℃ |
试剂一:液体 | 45ml | 4℃避光 |
说明书 | 一份 |
提取液使用前需要预冷
自备仪器和用品:
酶标仪、低温台式离心机、可调式移液器、96孔板、恒温水浴锅、冰和蒸馏水。
样品的制备:
血清、血浆、唾液或尿液等液体样品
血浆(制备时可以使用肝素或柠檬酸钠抗凝,不宜使用 EDTA 抗凝)4℃,5000rpm 离心10min,取上清待测。血清、唾液或尿液样品直接用于测定,也可以-80℃冻存(不宜超过30 d)后再测定。
(2) 组织样品
按照组织质量(g):提取液体积(ml)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1ml提取液)进行冰浴匀浆,然后 10000g,4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
(3) 细胞样品
按照细胞数量(104 个):提取液体积(ml)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细胞加入1ml 提取液),冰浴超声波破碎(功率 200W,超声 3s,间隔 10s,重复 30 次);10000g,4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
测定步骤:
酶标仪预热30min以上,调节波长至515nm。
样本测定
试剂名称(μl) | 空白管 | 测定管 |
提取液 | 20 |
|
样品 |
| 20 |
试剂一 | 380 | 380 |
充分混匀,室温避光反应 20min,取 200μl 至 96 孔板测定 515nm 吸光值,△A= A 空白-A 测定 |
注意:
1.空白管只需测定一次,若 A 测定小于 0.2,需用提取液稀释样品后进行检测。
2.反应结束后若溶液中存在絮状沉淀,需要2000xg离心10min,取上清进行检测。
总抗氧化能力计算公式:
1、以自由基清除率表示:
DPPH 自由基清除率(%)=(A 空白-A 测定)÷A 空白×100%
2、以标准曲线上获得的抗氧化剂 Trolox 的量表示:
标准曲线:y = 0.7072x - 0.0081 R2 = 0.9977 x:Trolox 浓度(μmol/ml)
y:吸光值差值△A
单位定义:用从标准曲线上获得的抗氧化剂Trolox的量来表示样本的DPPH自由基清除能力。
(1)按样本质量计算
总抗氧化能力(μmol Trolox/g 鲜重)=(△A+0.0081)÷0.7072×V 样÷(V 样÷V 样总×W)
=1.414×(△A+0.0081)÷W
(2)按样本蛋白浓度计算
总抗氧化能力(μmol Trolox/mg prot)=(△A+0.0081)÷0.7072×V 样÷(V 样÷V 样总×Cpr)
=1.414×(△A+0.0081)÷Cpr
(3) 按细胞计算
总抗氧化能力(μmol Trolox/104cell)=(△A+0.0081)÷0.7072×V 样÷(V 样÷V 样总×细胞数量(万个)
= 1.414×(△A+0.0081)÷ 细胞数量(万个)
(4)按液体体积计算
总抗氧化能力(μmol Trolox/ml)=(△A+0.0081)÷0.7072
=1.414×(△A+0.0081)
V 样总:加入提取液体积,1 ml;V 样:反应中样品体积,20μl;W:样品质量,g;Cpr:
样本蛋白浓度,mg/ml
注意事项:
1. 尽量避免使用在酸性条件下呈红色或接近红色的试剂,否则对本试剂盒的检测结果产生
干扰。
2. 样品中不宜添加 Tween、Triton 和 NP-40 等去垢剂和 DTT、巯基乙醇等影响氧化还原反
应的还原剂。
3. 若液体样本为碱性,需要用提取液稀释至酸性后再检测。
关键字: 总抗氧化能力检测试剂盒(DPPH法);
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