1. 检测原理
试剂盒采用双抗体夹心法原理：将捕获抗体包被于酶标板上，捕获样品及校准品中待测物，加入辣根过氧化物酶标记的酶标二抗，结合形成“抗体-抗原-抗体-HRP”免疫复合物，加入TMB显色后，若样本中有待测物则显蓝色，加入终止液停止反应。检测过程中游离的成分均被洗去，用酶标仪在450 nm处测OD值，颜色的深浅和样品中的待测物含量呈正比，通过绘制标准曲线计算出样本中待测物的浓度。
2. 需要但未包含的实验材料
· 蒸馏水或去离子水，一次性离心管、一次性手套等耗材；
· 移液器、多通道移液器及配套枪头；
· 烧杯、量筒、试剂瓶等容器具；
· 用于封贴微孔板的封板膜或其他替代材料；
· 微孔板振荡器（如有需要）、离心机、旋涡振荡器等辅助设备；
· 恒温培养箱、恒温水浴箱、酶标仪、洗板机。
3. 试剂的准备及储存
· 1×洗液的配制：浓缩洗液（20×）如有晶体析出，需在37℃下加热至晶体全部溶解后使用。用蒸馏水1:20稀释，例如：10mL浓缩洗涤液加入190mL的蒸馏水，混合均匀。
1×通用稀释液的配制：用蒸馏水1:20稀释，例如：10mL的20×浓缩通用稀释液加入190mL的蒸馏水，混合均匀。
1×酶标抗体工作液的配制：100×酶标抗体用“1×通用稀释液”按1:100倍稀释，例如：10uL的（100×）酶标抗体加入990uL的“1×通用稀释液”，混合均匀。配制好的1×酶标抗体工作液可以在2~8℃保存8h。
· 工作校准品的配制：校准品开封前应离心30秒，确保所有校准品集中于底部；
准备7个离心管，将10×校准品按需吸取一定量用“1×通用稀释液”稀释10倍配制成校准品S1。例：50uL的10×校准品+450uL的“1×通用稀释液”，制备得到500μL的S1浓度校准品。在随后的6个离心管中分别加入250μL的“1×通用稀释液”，在这6个试管中（S2~S7）将S1校准品依次倍比稀释6个梯度至S7，共配制7个浓度的校准品，依次为：S1、S2、S3、S4、S5、S6、S7，如下图所示。“1×通用稀释液”作为空白校准品S0。
4. 样品采集、预处理及储存
· 血清：使用血清采集管采集全血，室温静置待血细胞凝集后取的血清，或直接在1000×g下离心15分钟取得血清。操作应柔和，避免溶血发生。获取的血清应及时进行检测，如不能及时进行检测，应等分为多份，储存在-20℃及以下温度条件，储存时间不超过6个月，样品冻融不超过2次。
· 血浆：使用EDTA或肝素采血管收集血浆。全血采集后以1000×g离心15分钟取得血浆。操作应柔和，避免溶血发生。获取的血浆应及时进行检测，如不能及时进行检测，应等分为多份，储存在-20℃及以下温度条件，储存时间不超过6个月，样品冻融不超过2次。
· 组织：组织称重后剪碎，将剪碎的组织加入裂解液，一般按1:4-1:9的重量体积比，比如100mg的组织样品对应400uL的裂解液，具体可根据实验需要适当调整，最后将匀浆液于5000×g离心5-10分钟，取上清检测。
· 细胞：取适量细胞，于冰上进行超声破碎，5000×g离心5-10分钟，取上清检测。
· 细胞上清：取细胞上清于5000×g离心5-10分钟，取上清检测。
5. 结果计算
以空白孔OD值进行调0后进行标曲拟合及结果计算。
以下曲线拟合方式均可使用，选择拟合后r值最佳的拟合方式进行结果计算。
l 四参数逻辑（4-P）曲线拟合：以浓度值为横坐标，吸光度值为纵坐标；
l 多项式曲线拟合：2次多项式、3次多项式；
l 双对数直线拟合：以浓度值取对数，吸光度值取对数后，进行直线拟合；
l 点对点拟合：各相邻点之间分别单独进行线性拟合，分段计算；
推荐使用专业化软件进行结果拟合和计算，如ELISACALC、SPSS、Graphpad Prism等。
**最终样本浓度应乘上样本的稀释倍数。
曲线拟合方式示例图，以下数据和曲线仅供示例，与本试剂盒测定结果无关。
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2）生化试剂：细胞培养试剂、氨基酸类、蛋白质及多肽类、抗生素类、酶/辅酶类、植物激素及核酸类、糖与碳水化合物类、彩虹Marker、色素类、维生素类、分离试剂类、表面活性剂类、缓冲剂类、病理试剂等
3）标准品&对照品）细胞类：传代细胞（人细胞、小鼠细胞、大鼠细胞等）、细胞系（人细胞株、小鼠细胞株、大鼠细胞株等）
4）抗体：一抗、标记一抗、二抗、标记二抗等
5）培养基/培养液：即用型培养基、颗粒培养基、显色培养基、干粉培养基、细胞培养血清等
6）检测试剂盒：免疫组化试剂盒、生化检测试剂盒、金标检测试剂盒、分子生物学检测试剂盒等