人免疫球蛋白lambda骨髓瘤细胞带荧光素酶；MM.1S/LUC (STR)

人免疫球蛋白lambda骨髓瘤细胞带荧光素酶；MM.1S/LUC (STR)

商品属性

来源：由MM.1S细胞（源自42岁黑人女性多发性骨髓瘤患者外周血，分泌IgGλ轻链）通过慢病毒转染稳定整合萤火虫荧光素酶（Luciferase）基因构建，已通过STR分型鉴定（位点包括Amelogenin、D3S1358等）。

核心特征：

荧光素酶表达：可通过检测 luciferase 活性实时监测细胞增殖、迁移或体内成瘤情况

表面标志物：CD25⁺、CD38⁺、CD52⁺，表达糖皮质激素受体（GR），对地塞米松敏感

生长特性：混合生长（悬浮为主，少量疏松贴壁），形态呈淋巴母细胞样

培养条件

培养基 RPMI-1640 + 10%胎牛血清 + 1%双抗（青霉素/链霉素）

培养环境 37℃、5% CO₂、湿度70%-80%

传代方法 1:2传代（细胞密度达80%-90%时操作）：

1. 悬浮细胞直接离心（1000rpm×5min）

2. 贴壁部分用0.25%胰酶消化1-2min，终止后合并离心

冻存液 90% FBS + 10% DMSO 或无血清冻存液（如货号C7001）

研究应用

MM.1S/LUC因携带荧光素酶报告基因，广泛用于：

体内成像研究：通过小动物活体成像系统（IVIS）追踪肿瘤生长、转移及药物疗效

药物筛选模型：评估靶向骨髓瘤药物（如蛋白酶体抑制剂、BCMA单抗）的体外/体内活性

信号通路研究：结合荧光素酶活性检测NF-κB、STAT3等通路的激活状态

关键操作注意事项

混合生长细胞处理：

悬浮细胞：直接收集培养液离心，避免遗漏；

贴壁细胞：用PBS轻洗后胰酶消化，确保两种状态细胞均被收集。

荧光素酶活性检测：

实验前24小时更换新鲜培养基，避免血清残留影响检测灵敏度；

底物（如D-荧光素）工作浓度建议50-150μg/mL，避光孵育10-15分钟后检测。

STR鉴定与传代限制：

建议每20代重新验证STR分型（已知STR图谱可参考供应商提供的DSMZ或ATCC比对数据）；

长期培养需定期检测荧光素酶表达稳定性（可通过流式分选或有限稀释法纯化阳性克隆）。培养特性

生长方式：

混合生长（悬浮为主，部分轻微贴壁），需定期观察贴壁细胞融合度（不超过80%）。

贴壁细胞需用细胞刮处理后与悬浮细胞合并离心（1000rpm，5分钟），重悬分瓶。

培养液管理：

若培养液变黄，需补充新鲜培养液或分瓶。

建议传代比例1:2至1:3，每周换液2-3次。

复苏注意事项：

复苏后需约2周恢复稳定生长状态。

荧光素酶标记特性

该细胞系携带荧光素酶报告基因（Luc），适用于活体成像或体外荧光检测实验，需配套使用荧光素底物（如D-荧光素钾盐）进行信号检测。

质量控制

STR鉴定：提供STR图谱以确保细胞株遗传一致性。

注意事项

避免贴壁细胞过度融合，否则可能影响增殖活性。

长期培养需定期检测支原体污染。
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