产品介绍:
检测原理与核心优势
该试剂盒采用的是实时荧光定量PCR(qPCR)技术,具体为TaqMan荧光探针法。
核心原理:针对大麦基因组中高度保守的内源基因设计特异性引物和TaqMan探针。根据相关行业标准(如轻工行业标准计划),通常靶向检测大麦的PKABA1基因(ABA诱导蛋白激酶基因)或LTS1基因(低温诱导蛋白基因)。在PCR扩增过程中,随着目标DNA的指数级扩增,探针被特异性切断,荧光信号随之释放并被仪器实时捕捉。
高特异性:引物和探针针对大麦特有序列设计,不会与其他谷物(如小麦、玉米、水稻等)发生交叉反应。
产品名称 | 大麦源性成分核酸检测试剂盒(PCR-荧光探针法) | 货号 | AP3496 |
产品分类 | 荧光PCR | 规格 | 50T |
主要优势:
高特异性:专一性强,只扩增大麦源性成分,与其他植物源性成分无交叉反应。
高灵敏度:检出限可达1×10³ 拷贝/毫升或0.1%(相对于总DNA),能够检测出极低含量的大麦成分。
快速准确:全程检测时间约2小时(含核酸提取),结果判读直观。
抗干扰性强:可检测深加工样本(如经过高温烘焙、发酵、水解等处理的食品),稳定性好。
�� 产品性能指标
根据相关产品信息及行业标准,该试剂盒通常具备以下指标:
指标项目 性能参数参考
检测范围 2×10³ ~ 1×10⁸ 拷贝/毫升 (Copies/mL)
最低检测限 1×10³ 拷贝/毫升 或 0.1% (w/w)
反应体系 20 μL
适用仪器 ABI 7500, Bio-Rad CFX96, Roche 480, Mx3005P, LineGene9600等实时荧光定量PCR仪
适用样本 谷物种子、麦片、饲料、啤酒、威士忌、深加工食品、植物蛋白饮料等。
�� 主要组分与储存
试剂盒通常包含以下组分(以48T或50T规格为例):
qPCR预混液:包含反应缓冲液、dNTPs、Mg²⁺、Taq酶等。
引物探针混合液:针对大麦源性特异序列设计的引物和探针。
阴性对照 (NG):非大麦源性DNA或水。
阳性对照 (PG):含有大麦源性基因片段的质粒或标准DNA(通常浓度为1×10⁷拷贝/μL)。
储存条件:所有组分应于 -20℃ 条件下避光保存,有效期通常为 12个月。运输过程需使用干冰或冰袋,避免反复冻融。
�� 标准操作流程
样本处理与DNA提取
采集待检测的谷物种子、饲料或食品样本。
使用CTAB法或商品化的植物基因组DNA提取试剂盒,提取样本的基因组DNA作为模板。
试剂准备
将试剂完全解冻,各组分在使用前需涡旋混匀,并瞬时离心。
计算所需反应管数量(待检样品数 + 阴性对照 + 阳性对照)。
反应体系配置
在冰上操作,按说明书比例配制反应体系(通常为20 μL)。
上机扩增与检测
将配置好的反应管放入荧光定量PCR仪中。
设置好荧光通道(通常为FAM)、反应程序并运行。
结果判读
阳性:Ct值 ≤ 36,且扩增曲线呈典型的“S”型增长。
阴性:Ct值 ≥ 40,曲线为直线或轻微斜线,无“S”型扩增曲线。
⚠️ 注意事项
防止污染:实验应严格分区(试剂准备区、样本制备区、扩增区),避免气溶胶污染。反应结束后严禁开盖,应直接丢弃入密封袋中处理。
操作规范:试剂配制和加样步骤建议在冰上进行,避免酶活性损失。反应液对光敏感,应避光保存和使用。
质控要求:每次实验必须设置阴性对照(无模板)和阳性对照。若阴性对照出现阳性扩增或阳性对照无扩增,则本次实验结果无效。
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注意事项
防污染操作
需在试剂准备区、样本处理区、扩增区独立操作,使用带滤芯吸头及专用实验服。
阳性对照管理
浓度高达1×10⁸拷贝/μL,需单独存放并避免污染其他试剂。
局限性
仅限科研使用,不可用于临床诊断;
环境样本中可能存在PCR抑制剂,需设置内参对照。
关键字: 大麦;源性成分;PCR-荧光探针法;核酸检测试剂盒;
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