大鼠睾丸间质细胞
细胞简介 :

大鼠睾丸间质分离自睾丸组织;睾丸间质细胞成群分布在曲精小管之间,胞体呈圆形,椭圆形或不规则形,胞体较大,直径约20μm,胞质呈嗜酸性,细胞核呈圆形或卵圆形,常位于中央,染色较淡,有1~2个核仁线粒体多,呈管嵴状,无分泌颗粒。从青春期开始,睾丸间质细胞受垂体前叶嗜碱性细胞分泌的间质细胞刺激素(黄体生成素)的作用,能合成分泌雄性激素,可促进的发生和男性生殖器官发育,以及维持性征和性功能。
产品规格 | 5×10^5Cells/T25 | 英文名称 | Rat Testicular Mesenchymal Cells |
生长特性 | 贴壁 | 细胞形态 | 成纤维细胞样 |
货号 | XG-X4842 | 组织来源 | 睾丸组织 |
产品信息:

产品名称 大鼠睾丸间质细胞
英文名称 Rat Testicular Mesenchymal Cells
组织来源 睾丸组织
默认种属 大鼠
产品规格 5×10^5Cells/T25
培养信息:

培养基 含FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptomycin等
换液频率 每2-3天换液一次
生长特性 贴壁
细胞形态 成纤维细胞样
传代特性 可传5代左右;3代以内状态佳
消化液 0.25%
培养条件 气相:空气,95%;CO2,5%
大鼠睾丸间质细胞体外培养周期有限;建议使用配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养,以此保证该细胞的最佳培养状态。
方法简介 公司实验室分离的大鼠睾丸间质采用胶原酶消化法制备而来,细胞总量约为5×10?cells/瓶。
质量检测 公司实验室分离的大鼠睾丸间质经3β-HSD免疫荧光鉴定,纯度可达90%以上,且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。
培养操作方法:

核心特点
高度生理相关性:保留了体内来源组织的结构、功能和基因表达特征。
有限寿命:与无限增殖的肿瘤细胞系不同,原代细胞增殖能力有限,经过一定次数的分裂后会进入衰老期,这更符合正常细胞的生理状态。
异质性:初始培养物通常是多种细胞类型的混合物,有时需要通过差速贴壁等方法进行纯化。
操作要求高:对培养环境、试剂质量和无菌操作的要求极为严格,培养难度大于永生化细胞系。
组织块培养法
取材与剪切
在无菌条件下取出组织,用Hanks液或PBS清洗,去除血污和脂肪、结缔组织等非目标成分。
用眼科剪将组织剪切成 0.5-1 mm3 的小块。
接种
用吸管将组织块均匀地贴附在培养皿或培养瓶的内表面,各组织块之间保持一定间距(约0.5 cm)。
吸去多余液体,将培养器皿翻转,放入 37℃、5% CO的培养箱中,静置 1-3小时,让组织块牢固贴壁。
加液培养
待组织块贴壁后,轻轻翻转培养瓶,从一侧缓慢加入足量的培养液,使组织块浸没在液体中,注意不要让液体直接冲击组织块,以免冲起。
继续在培养箱中静置培养。通常 3-5天 后可观察到细胞从组织块边缘长出。
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关键操作技巧与注意事项:
成功的原代培养依赖于严谨的细节控制:
严格无菌操作:这是实验成功的基石。所有操作需在生物安全柜中进行,试剂和耗材必须无菌。
保持静置:细胞接种后的最初24-48小时内,应保持培养瓶绝对静置,避免频繁取出观察或晃动,这有助于细胞贴壁和伸展。
优化消化过程:
消化时间要恰到好处,过长会损伤细胞,过短则细胞分散不佳。
胶原酶对组织的损伤较小,常用于分离活性要求高的细胞;胰蛋白酶作用较强,需严格控制时间。
酶液应新鲜配制,避免活性下降。
控制接种密度:原代细胞在低密度下不易存活,建议适当提高初始接种密度,以保证细胞间的相互作用促进其生长。
定期换液:根据培养基颜色变化(如变黄)或每隔2-3天更换一次培养液,以清除代谢废物并补充营养。
关键字: 大鼠睾丸;间质细胞;
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