规格：100mL/500mL
保存：RT，避光保存，有效期1年。
产品说明：
本试剂仅用于科研领域，不宜用于临床诊断或其他用途。
植物体内的碳素营养状况以及农产品的品质性状，常以糖含量作为重要指标。单糖和某些寡糖(如麦芽糖)含有游离的醛基或酮基，具有还原性，属于还原糖；多糖和蔗糖等属于非还原糖。可以利用多糖能被酸水解为单糖的特性通过测定水解后的单糖含量对总糖进行测定。
DNS试剂是植物总糖和还原糖检测(硝基水杨酸法)的成分之一，其检测原理是还原糖在碱性条件下被氧化成糖酸，3,5-二硝基水杨酸被还原为棕红色的氨基化合物。在一定范围内，还原糖的量与棕红色产物的颜色深浅程度呈一定比例关系。在540mm处测定棕红色物质的吸光度，该吸光度值与还原糖含量呈线性关系，利用比色法和标准曲线测得样品中的还原糖和总糖的含量。
自备材料：
蒸馏水
50mL离心管
离心机
水浴锅或恒温箱
分光光度计
盐酸溶液、氢氧化钠溶液
操作步骤（仅供参考）：
还原糖的提取
称取植物样品0.5-3g，剪碎，加入蒸馏水约3mL匀浆，转移至烧杯或三角瓶中，用12mL蒸馏水冲洗研磨器2-3次，洗出液也转移至该容器。
50℃水浴30min，并不时搅拌，以便还原糖彻底浸出。
将沉淀和浸出液转移至50mL离心管，4000g离心5min。
留取上清液，向沉淀中加入20mL蒸馏水，混匀，再次4000g离心5min。
留取上清液，将二次获得的上清液合并，用蒸馏水定容至100mL(提取液)，混匀，作为还原糖待测液。
总糖的水解和提取
称取植物样品0.5-3g，剪碎，加入蒸馏水约3mL匀浆，转移至烧杯或三角瓶中，用12mL蒸馏水冲洗研磨器2-3次，洗出液也转移至该容器。
向容器中加入10mL 6M盐酸溶液，搅拌均匀，煮沸30min，并不时搅拌。
取两滴滴加于载玻片上，滴加一滴显色液，检查水解是否完全，如已经水解完全，则不显示蓝色。
注：这里的显色液用稀碘液即可
水解完毕后，冷却至室温，加入6M 氢氧化钠溶液，使溶液pH至7.4，用蒸馏水定容至100mL，混匀，4000g离心5min或过滤。
取上清或滤液10mL，用蒸馏水定容至100mL，成稀释1000倍的总糖水解液(提取液)，取1mL总糖水解液，测定其还原糖的含量。
制作葡萄糖标准曲线：取干净离心管或试管，按下表进行操作，以0号调零，检测540mm处吸光度，以吸光度值为纵坐标，各标准浓度(mg/mL)为横坐标作图得标准曲线。
还原糖测定：取制备好的还原糖提取液或者总糖水解液1mL，分别加入DNS试剂2mL，其余操作同标准曲线的操作，540nm处测定各管的吸光度。
计算：
还原糖的百分含量(%)=(C×VT)/(m×VS)×100
总糖的百分含量：
总糖含量(%)=(C×VT)/(m×VS)×100×10×0.9
式中：C=从标准曲线查的糖量(mg)
VT=提取液的体积(mL)
m=植物样品的质量(mg)
VS=测定时用的样品体积(mL)
注意事项：
上述低温试剂避免反复冻融，以免失效或效率下降。
待测样本如不能及时测定，应置于2-8℃保存，3天内稳定。
如果样品还原糖浓度过高，应用蒸馏水稀释后重测，结果乘以稀释倍数。
总糖计算公式在测定干扰杂质很少、还原糖含量相对总糖含量很少时使用，×0.9是为了从测定出的总糖水解成单糖中，扣除水解时所消耗的水量。
