H6 亚型流感病毒检测试剂盒
1. 检测原理:
产品名称 | H6 亚型流感病毒检测试剂盒 | 分类 | 荧光PCR |
货号 | XG-P1663 | 用途 | 仅供科研研究实验 |
该试剂盒通常采用实时荧光定量 RT-PCR(qPCR)技术,具体为 TaqMan 探针法。
核心原理:
靶基因:针对 H6 亚型流感病毒基因组中血凝素(HA)基因的高度保守区域设计特异性引物和探针。
检测机制:在 PCR 扩增过程中,探针与模板结合并被酶切降解,释放荧光信号(通常为 FAM 荧光素)。仪器实时监测荧光信号的累积,从而实现对病毒核酸的定性或定量检测。
特异性:优秀的试剂盒能将 H6 亚型与 H5、H7、H9 等其他禽流感亚型区分开,避免交叉反应。
2. 试剂盒组成 (典型配置)
一个标准的 50 次(50T)试剂盒通常包含以下组分:
组分名称 规格 (示例) 作用 保存条件
PCR 反应液 500 μL (2×) 含 dNTPs、Mg2、缓冲液 -20℃
酶混合液 50 μL 含逆转录酶、Taq DNA 聚合酶 -20℃
H6 特异性引物/探针混合液 50 μL 识别 H6 亚型特异序列 -20℃
阳性对照 50 μL 含 H6 靶基因片段的质粒 (高浓度) -20℃
阴性对照 100 μL 无菌生理盐水或缓冲液 -20℃
内标 (Internal Control, IS) 50 μL 用于监控提取和扩增过程是否正常 -20℃
3. 适用样本与操作流程
适用样本类型:
禽类拭子:鸭、鹅、鸡的咽喉拭子、泄殖腔拭子。
组织样本:病死禽的肺脏、脾脏、脑组织等。
环境样本:活禽市场环境涂抹样本、污水。
操作流程详解:
第一步:样本采集与处理
使用无菌棉拭子采集禽类咽喉或泄殖腔分泌物,放入含病毒保存液(VTM)的采样管中,充分震荡洗脱。
第二步:病毒 RNA 提取
使用病毒 RNA 提取试剂盒(如磁珠法或柱提法)从样本液中提取总 RNA。
注意:此步骤需防止 RNA 酶降解,建议在生物安全柜中操作。
第三步:PCR 反应体系配置 (20 μL 体系示例)
在冰上配制反应混合液:
2× qPCR Mix: 10 μL
引物/探针混合液: 1 μL
酶混合液: 0.4 - 1 μL
模板 RNA: 5 - 10 μL
无核酸酶水: 补足至 20 μL
第四步:上机扩增
仪器设置:荧光通道选择 FAM(用于检测病毒),若含内标则选择 VIC/HEX 通道。
反应程序:
逆转录:42℃ - 50℃ (30-60 分钟)
预变性:95℃ (2-5 分钟)
循环扩增:95℃ 15秒 → 60℃ 30-60秒 (采集荧光),进行 40-45 个循环。
第五步:结果判读
阳性 (+):FAM 通道出现典型的“S”型扩增曲线,且 Ct 值 ≤ 38。
注:Ct 值越小,表示样本中病毒含量越高。
可疑 (±):38 < Ct 值 ≤ 40,建议复测。
阴性 (-):FAM 通道无扩增曲线,或 Ct 值 > 40。
4. 关键注意事项
防污染 (重中之重):
PCR 实验室必须严格分区(试剂准备区、样本制备区、PCR 扩增区)。
阳性对照含有高浓度的病毒核酸片段,极易造成气溶胶污染,导致假阳性。操作时必须小心,加完样后立即密封离心。
试剂保存:
试剂盒通常需要 -20℃ 避光保存。
严禁反复冻融。反复冻融会降低酶的活性,导致灵敏度下降。
生物安全:
禽流感病毒属于动物源性病原微生物,样本处理应在生物安全二级(BSL-2)实验室进行,操作人员需做好个人防护。
适用范围:
大多数此类试剂盒属于 “仅限科研 (RUO)” 或 “兽医诊断用”,不得用于人类临床诊断。
总结
H6 亚型流感病毒检测试剂盒是一种利用荧光 PCR 技术检测禽流感病毒 H6 亚型的高灵敏度工具。它通过特异性引物和探针识别病毒的 HA 基因,帮助兽医或科研人员快速判断样本中是否含有该亚型病毒。在使用时,务必严格遵守防污染规范,并注意试剂盒的保存条件和适用范围。
公司正在出售的产品:
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细菌丁酸甘油脂琼脂平板 | 胎盘叶酸受体蛋白2单克隆抗体 |
激活素受体样激酶1抗体 | PE-Cy5标记小鼠CD44单克隆抗体 |
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