猪腺病毒染料法荧光定量PCR试剂盒
商品属性
产品名称 | 猪腺病毒染料法荧光定量PCR试剂盒 | 英文名称 | Porcine Adenovirus Dye-based qPCR Kit |
规格 | 50T | 货号 | PR4329 |
产品概述
本试剂盒采用优化的SYBR Green I染料法实时荧光定量PCR(Quantitative Real-time PCR, qPCR)技术,用于特异性检测猪样本(如粪便、肠道内容物、组织匀浆液、细胞培养物等)中的猪腺病毒(Porcine Adenovirus, PAdV)核酸(DNA)。

原理
试剂盒包含针对PAdV高度保守区域设计的特异性引物。在PCR扩增过程中,SYBR Green I染料特异性地嵌入新合成的双链DNA(dsDNA)中,在激发光下发出荧光信号。荧光信号的强度与反应体系中产生的dsDNA量成正比,通过实时监测荧光强度的变化,即可实现对起始模板DNA的定量分析。
产品特点
高特异性: 优化的引物设计确保对猪腺病毒的特异性扩增。
高灵敏度: 可检测低拷贝数的病毒核酸。
快速高效: 配合快速PCR程序,可在约1.5-2小时内完成检测。
定量准确: 标准曲线法可实现病毒载量的准确定量。
操作简便: 预混Master Mix形式,减少操作步骤,降低污染风险。
用途: 适用于猪腺病毒感染的临床诊断、流行病学调查、病毒载量监测、疫苗效力评估及科学研究等。
试剂盒组分
| 组分名称 | 规格 (48 tests) | 规格 (96 tests) | 储存条件 |
| 2× SYBR Green qPCR Master Mix | 600 μL × 1 管 | 1200 μL × 1 管 | -20℃ |
| 包含: 热启动DNA聚合酶、dNTPs、Mg²⁺、优化Buffer、SYBR Green I染料、稳定剂等。 | | | |
| PAdV qPCR Primer Mix (F+R) | 60 μL × 1 管 | 120 μL × 1 管 | -20℃ |
| 包含: 针对PAdV的特异性正向引物(Forward Primer)和反向引物(Reverse Primer),工作浓度。 | | | |
| Nuclease-Free Water | 1 mL × 1 管 | 1 mL × 1 管 | 室温/-20℃ |
| PAdV Positive Control (PC) | 50 μL × 1 管 | 50 μL × 1 管 | -20℃ |
| 包含: 已知拷贝数的PAdV特异性靶片段(如克隆质粒或体外转录RNA/DNA)。 | | | |
| Negative Control (NC) | 50 μL × 1 管 | 50 μL × 1 管 | -20℃ |
| 通常为: Nuclease-Free Water或确认无PAdV的猪样本核酸提取液。 | | | |
| 说明书 | 1 份 | 1 份 | 室温 |
样本要求
样本类型: 猪粪便拭子/内容物、肠道组织、淋巴结、肺、脾、细胞培养上清/裂解物等。
样本处理: 严格按照核酸提取试剂盒说明书操作,提取样本中的总DNA。提取的DNA应置于冰上或-20℃/-80℃保存备用。建议提取后尽快进行qPCR检测。
核酸纯度与浓度: 提取的DNA应无明显降解,A260/A280比值在1.7-1.9之间为佳。避免使用含有高浓度抑制剂(如血红素、胆盐、腐殖酸等)的模板。建议使用前对提取的样本DNA进行适当稀释(如1:10),以降低潜在抑制剂的影响。
检测程序
实验前准备:
从-20℃冰箱取出试剂盒(除Nuclease-Free Water外),置于冰上融化。避免反复冻融! 使用前需轻轻混匀各组分,短暂离心使液体沉至管底。
准备好自备材料、仪器及实验区域。移液器、工作台面等需进行消毒。
根据待检测样本数量(包括样本、阳性对照PC、阴性对照NC),提前标记好PCR管或PCR板孔。
强烈建议在独立区域(最好是不同的房间或超净台)配制反应混合液,与加样区域分开。
反应混合液配制(以单反应20μL体系为例,建议配制混合液时预留10%的富余量):
在洁净的离心管中,按以下比例配制反应混合液(Master Mix)。根据总反应数(n)计算所需各组分体积:
| 组分 | 单反应体积 (μL) | n个反应体积 (μL) |
| 2× SYBR Green qPCR Master Mix | 10.0 | 10.0 × (n+1) |
| PAdV qPCR Primer Mix (F+R) | 0.8 | 0.8 × (n+1) |
| Nuclease-Free Water | 7.2 | 7.2 × (n+1) |
| 总体积 | 18.0 | 18.0 × (n+1) |
涡旋振荡或轻轻吹打混匀混合液,短暂离心。
加样:
将18.0 μL混合液分装至预先标记好的PCR管/板孔中。
分别加入2.0 μL以下模板:
待测样本DNA
PAdV Positive Control (PC)
Negative Control (NC)
盖紧管盖或封好板膜,短暂离心使液体沉至管底/孔底,避免气泡。
PCR扩增程序设置:
将反应管/板放入荧光定量PCR仪中,设置以下循环程序(以ABI 7500为例,具体可根据仪器和引物特性优化):
| 步骤 | 温度 | 时间 | 循环数 | 信号采集 | 说明 |
| 预变性 | 95℃ | 5 min | 1 | 不采集 | 激活热启动酶,DNA变性 |
| PCR扩增 | 95℃ | 15 sec | 40-45 | 不采集 | 变性 |
| | 60℃ | 30 sec | | 采集 (SYBR) | 退火/延伸 & 荧光采集 |
| 熔解曲线分析 | 95℃ | 15 sec | 1 | 不采集 | |
| | 60℃ | 1 min | | 不采集 | |
| | 95℃ | 15 sec | | 连续采集 | 熔解曲线 (SYBR) |
| | 60℃ | 15 sec | | | |
退火/延伸温度(60℃) 是引物特异性的关键,请根据实际引物Tm值优化(通常在55-65℃之间)。
荧光采集通道: 选择SYBR Green/FAM通道(通常为FAM/SYBR通道)。
熔解曲线分析: 是SYBR Green法区分特异性产物与非特异性产物(如引物二聚体)的关键步骤。设置从高于Tm值(如60℃)缓慢升温到95℃,并连续采集荧光信号。
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