小鼠牙周膜干细胞

小鼠牙周膜干细胞

产品信息：

英文名称：Mouse Periodontal Ligament Stem Cells

组织来源：牙周膜

默认种属 小鼠

产品规格 5×10^5Cells/T25

 方法简介 实验室分离的小鼠牙周膜干采用胶原酶消化结合差速贴壁法制备而来，细胞总量约为5×10⁵cells/瓶。

质量检测  实验室分离的小鼠牙周膜干经CD44免疫荧光鉴定，纯度可达90%以上，且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。

细胞简介：

小鼠牙周膜干分离自牙周膜组织；牙周膜（牙周韧带、牙周间隙）是由致密结缔组织所构成。多数纤维排列成束，纤维的一端埋于牙骨质内，另一端则埋于牙槽窝骨壁里，使牙齿固位于牙槽窝内；牙周膜内有神经、血管、淋巴和上皮细胞等。成纤维细胞（Fibroblast）是疏松结缔组织的主要细胞成分，由胚胎时期的间充质细胞分化而来。间充质干细胞（mesenchymal stem cells，MSCs）来源于胚胎时期的中胚层组织，具有很强的自我复制和多向分化潜能，具有向脂肪细胞、成骨细胞、软骨细胞及肌细胞等多种终末细胞定向分化的能力，运用 MSCs来修复软骨损伤具有很好的应用前景，目前已能够从骨髓、脂肪、滑膜、骨骼、肌肉等组织以及羊水、脐带、脐带血中分离和制备间充质干细胞。牙周膜干细胞参与了牙周组织的病变、修复及再生过程。现在，利用牙周膜干细胞建立体外模型，已经成为有关员研究牙周组织疾病的重要手段。

培养信息：

培养基：含FBS、EGF、bFGF、Penicillin、Streptomycin等

换液频率：每2-3天换液一次

生长特性：贴壁

细胞形态：成纤维细胞样

传代特性：可传2-3代左右

消化液：0.25%

培养条件：气相：空气，95%；CO2，5%

小鼠牙周膜干体外培养周期有限；建议使用配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养，以此保证该细胞的佳培养状态。

细胞培养操作：

消化培养法

此方法利用酶（如胰蛋白酶、胶原酶）将组织分散成单个细胞或细胞团，形成细胞悬液进行培养，细胞生长较快。

取材与剪切

同样在无菌条件下获取组织，并用Hanks液清洗干净。

将组织剪切成更小的碎块（约 1 mm3），以便酶更好地发挥作用。

酶消化

将组织块转移至容器中，加入适量的酶消化液（如0.25%胰蛋白酶）。

在 37℃ 条件下消化 20-40分钟，期间可适当摇动或吹打。消化程度需在显微镜下观察，当组织分散成细胞团或单个细胞时，立即终止消化。

终止与洗涤

加入含血清的培养液以终止酶的消化作用（血清可抑制胰蛋白酶活性）。

将细胞悬液通过筛网过滤，除去未消化的组织块。然后以 1000 rpm 离心 5-10分钟，弃去上清液。

接种与培养

用适量新鲜培养液重悬细胞沉淀，进行细胞计数，并调整细胞密度至实验所需浓度（例如 5×10 cells/mL）。

将细胞悬液分装至培养瓶中，放入 37℃、5% CO 培养箱中静置培养。

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尽管价值巨大，但原代细胞的研究和应用也面临着显著的挑战：

获取困难：需要从新鲜组织中分离，对取材时间（通常在4-6小时的黄金窗口期内）、无菌操作和组织活性都有极高要求。

培养苛刻：原代细胞非常脆弱，需要特定的、成分复杂的培养基和生长因子，对培养环境（如温度、pH值）极为敏感。

批次差异：由于来源于不同的供体，不同批次的细胞在遗传背景和生理状态上存在固有差异，这给实验的可重复性带来了挑战。

成本高昂：从获取、分离到培养，整个过程耗时、费力且昂贵。